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【關(guān)鍵詞】 代謝組學(xué); 中西醫(yī)結(jié)合; 醫(yī)學(xué); 綜述
代謝組學(xué)是繼基因組學(xué)和蛋白質(zhì)組學(xué)之后發(fā)展起來的一種研究生物系統(tǒng)的組學(xué)方法。它是英國Nicholson教授及其同事于1999年正式提出的[1]。代謝組指的是“一個細(xì)胞、組織或器官中,所有代謝組分的集合,尤其指小分子物質(zhì)”,而代謝組學(xué)則是一門“在新陳代謝的動態(tài)過程中,系統(tǒng)研究代謝產(chǎn)物的變化規(guī)律,揭示機(jī)體生命活動代謝本質(zhì)”的科學(xué)[2],它所關(guān)注的是相對分子質(zhì)量為1 000以下的小分子。近年來代謝組研究已引起眾多研究者的注意,代謝組學(xué)與基因組學(xué)和蛋白質(zhì)組學(xué)不同,基因組學(xué)和蛋白質(zhì)組學(xué)告訴你可能發(fā)生什么,而代謝組學(xué)則告訴你已經(jīng)發(fā)生了什么;還有研究者認(rèn)為代謝組學(xué)是“組學(xué)”研究的終端[3]。為更好地將代謝組技術(shù)應(yīng)用于中西醫(yī)結(jié)合研究中,本文根據(jù)近年來國外的相關(guān)資料,對代謝組學(xué)的實驗技術(shù)、分析技術(shù)及其在現(xiàn)代醫(yī)學(xué)中的應(yīng)用現(xiàn)狀進(jìn)行了綜述,同時對代謝組學(xué)在中西醫(yī)結(jié)合研究中的發(fā)展趨勢進(jìn)行了展望。
1 代謝組學(xué)的實驗技術(shù)
1.1 代謝組學(xué)研究的常用技術(shù) 代謝組學(xué)研究常用核磁共振(nuclear magnetic resonance, NMR)和質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù),比如氣相色譜質(zhì)譜聯(lián)用儀(gas chromatographymass spectrometer, GCMS)和液相色譜質(zhì)譜聯(lián)用儀(liquid chromatographymass spectrometer, LCMS)等[4]。核磁共振光譜分析法是目前代謝組學(xué)研究應(yīng)用最廣泛的方法,NMR的優(yōu)勢在于對樣品無破壞性,樣品處理簡單,無需分離過程;缺點是靈敏度低,很難同時測定生物體系中共存的濃度相差較大的代謝產(chǎn)物,所需硬件的投資也較大。目前常用的是1DNMR,比如Brindle等[5]應(yīng)用NMR研究高血壓患者血清的代謝譜特征;Lehnhardt等[6]應(yīng)用NMR研究原發(fā)性和繼發(fā)性腦腫瘤的代謝譜差異等。1DNMR光譜的信息量大,但不可避免地存在峰圖的重疊,影響了隨后的分析,而2DNMR大大地改善了1DNMR峰圖的質(zhì)量[7],一些研究者開始應(yīng)用2DNMR開展代謝組研究,如Choi等[8]為了研究被煙草花葉病毒感染煙草的代謝譜變化,應(yīng)用2DNMR方法,結(jié)果發(fā)現(xiàn)5綠原酸等代謝物明顯增多。氣相色譜質(zhì)譜聯(lián)用是當(dāng)前最為活躍的聯(lián)用技術(shù),一般供試物經(jīng)GC分離為單一組分,按其不同保留時間,與載氣同時流出色譜柱,再經(jīng)接口,進(jìn)入質(zhì)譜儀,然后可通過EI或其他方法產(chǎn)生一定的MS圖譜。GCMS有很好的分離效率,可由計算機(jī)對MS圖譜進(jìn)行化合物數(shù)據(jù)庫的自動檢索核對,有利于迅速鑒識樣品。缺點是需要對樣品進(jìn)行衍生化預(yù)處理,這一步驟額外費時,甚至引起樣品的變化;衍生化預(yù)處理限制了GCMS的應(yīng)用范圍,無法分析熱不穩(wěn)定性的物質(zhì)和分子量較大的代謝產(chǎn)物。如A等[9]針對GCMS的代謝組研究,應(yīng)用多元統(tǒng)計方法對人血漿的提取和衍生化預(yù)處理方法進(jìn)行了研究。液相色譜質(zhì)譜聯(lián)用主要是高效液相色譜質(zhì)譜(high performance liquid chromatographymass spectrometry, HPLCMS)聯(lián)用,HPLCMS進(jìn)樣前不需進(jìn)行衍生化處理,適合那些不穩(wěn)定、不易衍生化、不易揮發(fā)和分子量較大的化合物。缺點是分離效率不高,分析的時間相對較長;沒有化合物數(shù)據(jù)庫可供檢索和比對,樣品的鑒別還需進(jìn)一步的分析[10]。如Yang等[11]使用LCMS方法結(jié)合主成分分析(principle component analysis, PCA)方法,比較肝炎、肝硬化與肝癌病人的尿液代謝譜的差異,結(jié)果發(fā)現(xiàn)一組尿代謝物與肝癌的相關(guān)性優(yōu)于傳統(tǒng)單一的甲胎蛋白。無論NMR、色譜和質(zhì)譜都有各自的優(yōu)缺點,為了充分發(fā)揮各種技術(shù)的優(yōu)勢,有研究者將三種技術(shù)聯(lián)合應(yīng)用于代謝組的研究。如Lenz等[12]應(yīng)用1HNMR和HPLCTOFMSMS技術(shù)相結(jié)合研究慶大霉素的腎毒性尿液的內(nèi)源性的代謝物變化,結(jié)果發(fā)現(xiàn)葡萄糖增加,三甲胺N氧化物(trimethylamine noxide, TMAO)降低等變化特點。
1.2 代謝組學(xué)研究的新技術(shù) 微量樣本是研究中經(jīng)常面對的難題,而毛細(xì)管電泳質(zhì)譜(capillary electrophoresismass spectrometry, CEMS)所需樣品量少,已廣泛地應(yīng)用于代謝組的研究中,如Sato等[13]選擇了CEMS進(jìn)行了水稻葉的代謝物檢測,成功地檢測了88種代謝物,這些代謝物涉及到醣酵解、三羧酸循環(huán)、磷酸戊糖途徑、光呼吸作用和氨基酸的生物合成等。近年來為了監(jiān)測活體動物特定組織區(qū)域內(nèi)代謝物的動態(tài)變化,研究者將微透析(microdialysis)技術(shù)引入了代謝組的研究,如Price等[14]應(yīng)用微透析結(jié)合NMR比較了SD大鼠各組織在局部缺血狀態(tài)下的代謝情況。作者提出微量滲析技術(shù)和NMR相結(jié)合是代謝組研究的強(qiáng)有力工具??梢姶x組同其他實驗技術(shù)一樣,有一個不斷完善的過程,一些研究者正致力于代謝組實驗技術(shù)的研究。
1.3 代謝組的研究材料 代謝組研究的樣本包括生物液體和組織,由于血漿和尿液收集簡單、易于長期檢測和包含大量的代謝信息,已經(jīng)成為代謝組研究常用的標(biāo)本;唾液也逐漸成為代謝組研究的另一種生物液體樣本,如Ramadan等[15]選擇了150個健康男性和女性,取唾液、血漿和尿液,應(yīng)用1HNMR研究不同性別之間的代謝物差異等。此外還有應(yīng)用腦脊液進(jìn)行代謝組研究的報道,如Coen等[16]應(yīng)用NMR研究細(xì)菌、真菌、病毒性腦膜炎腦脊液的代謝組變化,進(jìn)行腦膜炎的代謝組臨床診斷的探索研究。血漿或尿液代謝物為全身各細(xì)胞、組織、器官代謝的分泌物,但是血漿或尿液只能代表生物體的平均代謝狀態(tài)或代謝組“整體模式”,不能獲得具體組織的代謝狀態(tài)。組織代謝研究提供了局部的代謝信息,而一些疾病本身可能就只影響了局部的代謝,如Viant等[17]研究早期腦外傷動物模型大腦組織與血漿的代謝物變化,結(jié)果在大腦組織有氧化應(yīng)激(比如維生素C)興奮性中毒(比如谷氨酸)等代謝紊亂,而血漿中并沒有發(fā)現(xiàn)明顯的變化,因此組織代謝的研究具有重要的意義。目前組織標(biāo)本研究還不是很多,主要有肝、大腦皮層和小腦等,肝組織主要用于一些毒理學(xué)研究,如Azmi等[18]應(yīng)用NMR技術(shù),采集肝組織樣本研究肝毒性的代謝組變化等。大腦皮層、小腦組織主要用于神經(jīng)系統(tǒng)疾病的研究,如Griffin等[19]應(yīng)用NMR研究脊髓小腦性共濟(jì)失調(diào)動物模型小腦、大腦的提取物的代謝譜變化,結(jié)果發(fā)現(xiàn)谷氨酰胺增加,而γ氨基丁酸、膽堿、磷酸膽堿和乳酸鹽下降等特征。
1.4 代謝組研究的影響因素 充分了解代謝組研究的影響因素是應(yīng)用好代謝組技術(shù)開展醫(yī)學(xué)研究的前提,目前研究者們已經(jīng)注意到了代謝組研究的影響因素[20],除了實驗技術(shù)本身對代謝組研究的影響外,還有如樣品制備(抽提溶劑和溫度等)、儀器性能和數(shù)據(jù)分析方法等。不同生理狀態(tài)對代謝組的影響也引起了研究者的重視,比如性別、年齡、飲食、晝夜變化、文化等,因為這是代謝組技術(shù)在臨床應(yīng)用的關(guān)鍵問題[21]。如Stanley[22]等為了探索不同性別間的代謝物差異,選擇了NMR結(jié)合化學(xué)計量方法研究不同性別Wistar大鼠尿液的代謝譜,結(jié)果發(fā)現(xiàn)羥苯基丙酸等代謝物存在明顯的性別差異;Kochhar等[23]選擇了150名健康人,應(yīng)用NMR方法研究不同性別人血清和尿液的代謝譜差異,結(jié)果發(fā)現(xiàn)女性脂類的合成高于男性,男性的蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)換多于女性等差異。Bollard等[24]還綜述了不同生理狀態(tài)下的動物尿的代謝物特征,尤其在不同個體之間、性別、年齡、飲食、物種、品系、激素狀態(tài)、壓力及晝夜變化等,發(fā)現(xiàn)不同的生理狀態(tài)對代謝組有明顯的影響。Lenz等[25]收集了給予標(biāo)準(zhǔn)飲食的12名健康男性相隔14 d的血漿和尿液進(jìn)行NMR檢測,應(yīng)用PCA進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn)血漿的差異很小,但在尿液中存在很大的個體差異,同時發(fā)現(xiàn)所有受試者代謝譜存在晝夜變化規(guī)律。Lenz等[26]還比較了不同國家之間人群的代謝譜的差異情況,選擇單身的受試者,不進(jìn)行飲食限制,收集晨尿,應(yīng)用NMR進(jìn)行分析,使用PCA分析數(shù)據(jù),結(jié)果發(fā)現(xiàn)一些有統(tǒng)計學(xué)意義的差異,研究表明內(nèi)源性尿代謝譜受到文化、飲食的嚴(yán)重影響,因此在疾病或治療標(biāo)志物的篩選中需要特別注意這些影響因素,此外還需結(jié)合數(shù)學(xué)的方法以排除這些影響因素。
2 代謝組的分析技術(shù)
2.1 譜峰的預(yù)處理 譜峰的預(yù)處理對代謝組的后期分析有較大的影響,質(zhì)譜峰的預(yù)處理包括背景扣除、濾噪、保留時間校正、譜峰匹配和歸一化或標(biāo)準(zhǔn)化等。NMR譜峰的預(yù)處理包括背景扣除、濾噪、歸一化或標(biāo)準(zhǔn)化等。一些學(xué)者正對譜峰預(yù)處理的方法進(jìn)行研究,比如針對1HNMR原始光譜資料,Stoyanova等[27]介紹了一種基于時間窗口的自動校正譜峰的方法;WebbRobertson等[28]就對譜峰整合和歸一化方法進(jìn)行了研究。此外樣品的分析過程中不可避免地會出現(xiàn)譜峰漂移,F(xiàn)orshed等[29]比較了bucketing和PLF兩種最近發(fā)展的NMR峰位校正法,并應(yīng)用實例對兩種方法進(jìn)行了比較。氣或液質(zhì)聯(lián)用技術(shù),通過常規(guī)的重疊峰析法后,能分離300多種代謝物,但該方法耗時而且不能自動化。Jonsson等[30]發(fā)展了一種半自動的逐級多元曲線分辨處理質(zhì)譜數(shù)據(jù)的方法,該方法已經(jīng)應(yīng)用于不同發(fā)育時間植物葉的代謝物研究,結(jié)果表明該法和常規(guī)的重疊峰析法具有類似的可信度。還有研究者開發(fā)譜峰的預(yù)處理軟件,比如Katajamaa等[31]針對LCMS開發(fā)了MZmine軟件,該軟件主要用于代謝組資料的濾噪、譜峰匹配和標(biāo)準(zhǔn)化等預(yù)處理。
2.2 數(shù)據(jù)分析 醫(yī)學(xué)中的代謝組研究常常需要對疾病機(jī)制或治療相關(guān)的代謝標(biāo)志物進(jìn)行研究,常用的分析方法有PCA、t檢驗和方差分析等。如Coen等[32]應(yīng)用PCA方法對乙酰氨基酚肝毒性的代謝組資料進(jìn)行分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn)該肝毒性可能與肝臟線粒體利用丙酮酸鹽和脂肪酸β氧化功能下降有關(guān);Jansen等[33]還介紹了一種權(quán)重PCA方法處理代謝組資料;Smilde等[34]提出了一種基于方差分析的同時成分分析(ANOVAsimultaneous component analysis, ASCA)方法處理代謝組數(shù)據(jù)。在疾病的診斷研究方面常常應(yīng)用判別分析,比如應(yīng)用代謝組資料對患者進(jìn)行某病的是與否判別等。常用的方法有類模擬軟獨立建模(soft independent modeling of class analogy, SIMCA)、偏最小二乘法判別分析和人工神經(jīng)元網(wǎng)絡(luò)(artificial neural networks, ANN)等,比如Odunsi等[35]使用1HNMR研究上皮卵巢癌。選擇38名上皮卵巢癌病人,12名良性卵巢囊腫和53名健康婦女,應(yīng)用PCA方法降維數(shù)據(jù)和SIMCA方法進(jìn)行模式識別,結(jié)果分析判斷的準(zhǔn)確率為97%.Wang等[36]應(yīng)用LCMS技術(shù)研究2型糖尿病的血漿代謝譜,應(yīng)用PCA和偏最小二乘法顯著性分析(partial least squares discriminant analysis, PLSDA)方法能成功地將糖尿病人和對照正常人區(qū)分開來,為臨床診斷提供了參考。Bundy等[37]選擇了6種蠟樣芽胞桿菌,其中3種為實驗室使用的無毒的菌株,另3種為從腦膜炎患者分離的有毒的菌株,應(yīng)用核磁共振方法進(jìn)行代謝組學(xué)研究,采用主成分分析和權(quán)威的判別分析(canonical discriminant analysis, CDA)方法,結(jié)果發(fā)現(xiàn)判別分析能正確地將有毒、無毒菌株分開。Taylor等[38]使用433種代謝物資料,應(yīng)用人工神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)的方法建立數(shù)學(xué)模型,該模型能成功地對植物的基因型進(jìn)行判別分析。
3 代謝組技術(shù)在現(xiàn)代醫(yī)學(xué)研究中的應(yīng)用
3.1 在疾病機(jī)制研究中的應(yīng)用 目前代謝組在疾病機(jī)制研究中的應(yīng)用還不多,主要應(yīng)用于腫瘤、遺傳病和少數(shù)幾種常見病之中。如Akira等[39]應(yīng)用NMR研究高血壓大鼠與正常大鼠尿的代謝譜差異,應(yīng)用PCA的方法進(jìn)行分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn)牛磺酸、肌酸及一些未鑒定的代謝物存在明顯的差異。Pears等[40]應(yīng)用NMR結(jié)合統(tǒng)計學(xué)的模式識別方法,研究Cln3基因敲除的巴藤病小鼠動物模型腦組織的代謝組變化,結(jié)果發(fā)現(xiàn)谷氨酸含量增加、γ氨基丁酸(γaminobutyric acid, GABA)下降,提示在谷氨酸/谷酰胺與GABA之間存在神經(jīng)遞質(zhì)循環(huán)的不足,這些變化代表了Cln3小鼠表型出現(xiàn)前的生化變化。Ippolito等[41]為了研究預(yù)后不良前列腺癌的特征,首先分析原發(fā)性前列腺癌及細(xì)胞株的基因表達(dá)譜資料,獲得446條高表達(dá)的基因,應(yīng)用這些基因結(jié)合代謝組學(xué)研究前列腺癌的代謝途徑,結(jié)果發(fā)現(xiàn)預(yù)后不良前列腺癌存在谷氨酸脫羧酶等一些特征性代謝途徑。為了更好地應(yīng)用代謝組資料進(jìn)行疾病的機(jī)制研究,一些研究者將代謝組技術(shù)和其他技術(shù)相結(jié)合進(jìn)行疾病機(jī)制的探索研究,如Stentiford等[42]應(yīng)用代謝組結(jié)合蛋白質(zhì)組和組織病理學(xué)方法研究肝癌的發(fā)病機(jī)制等。
3.2 在疾病診斷中的應(yīng)用 由于代謝組監(jiān)測是一種快速和無損傷的方法,在疾病診斷方面的研究開展相對較多,如Brindle等[43]應(yīng)用NMR技術(shù)研究冠心病患者血清的代謝組變化,PLSDA模式識別方法不僅能對冠心病進(jìn)行有無的診斷,而且還能判斷病情的輕重。Yang等[44]以毛細(xì)管氣相色譜結(jié)合模式識別方法研究2型糖尿病血清代謝組的變化,結(jié)果發(fā)現(xiàn)血清脂肪酸譜能有效地將2型糖尿病和正常人區(qū)分開,模式識別方法提高了診斷的敏感性。Wishart[45]還將代謝組方法應(yīng)用于器官移植中監(jiān)測排斥反應(yīng),在器官移植前后監(jiān)測血清肌酸酐的代謝產(chǎn)物,認(rèn)為代謝組可能成為器官移植生存能力和排斥反應(yīng)的理想監(jiān)測工具。最近代謝組學(xué)技術(shù)還應(yīng)用于艾滋病的研究中,如Hewer等[46]應(yīng)用1HNMR檢測患者血清的代謝譜,結(jié)合模式識別方法,發(fā)現(xiàn)血清的代謝譜能夠?qū)?a href="http://thedailypurge.net/jibing/aizibing/" target="_blank" title="艾滋病" class="hotLink">艾滋病陽性和陰性的患者區(qū)分開來。隨著研究的深入,代謝組技術(shù)必將應(yīng)用于更多的疾病研究之中。
3.3 在藥理學(xué)研究中的應(yīng)用 代謝組在藥理學(xué)方面的研究,主要集中于毒理學(xué)研究,如Kleno等[47]為了研究肼苯噠嗪誘導(dǎo)的肝毒性,選擇肝臟樣本,應(yīng)用NMR技術(shù)研究血清樣本代謝譜,結(jié)果發(fā)現(xiàn)肼苯噠嗪引起了代謝物的明顯變化,主要與葡萄糖、脂肪、氧化應(yīng)激代謝相關(guān)。Heijne等[48]將溴苯誘導(dǎo)的肝炎大鼠血漿和尿液的代謝組資料結(jié)合大鼠的肝臟的基因表達(dá)譜資料分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)錄組和代謝組結(jié)合能提高肝毒性檢測的敏感性。Coen等[49]為了鑒定撲熱息痛肝毒性引起的生化變化,進(jìn)行了肝組織的基因表達(dá)譜和肝組織及其提取物和血漿代謝組研究,從生化途徑對3種資料進(jìn)行分析,在完整肝組織中,肝葡萄糖和肝糖原下降,血漿中的脂肪成分丙酮酸鹽、醋酸鹽、乳酸鹽增加,水提物中丙氨酸、乳酸鹽增加。整合這些資料提示肝臟的糖酵解率增加,代謝組研究結(jié)果和基因表達(dá)譜的變化是一致的,主要涉及脂肪和能量代謝,兩種技術(shù)相結(jié)合起到互補(bǔ)的作用。
4 代謝組學(xué)在中西醫(yī)結(jié)合研究中的應(yīng)用展望
由于代謝組技術(shù)的一些優(yōu)勢和特點,目前代謝組已在現(xiàn)代醫(yī)學(xué)中開展了一些研究,并取得了一系列的成績。因此中西醫(yī)結(jié)合也應(yīng)積極應(yīng)用代謝組技術(shù)開展證候、方藥及針灸等方面的研究。2005和2006年度國家自然科學(xué)基金開始對該方向進(jìn)行了資助,主要集中在腎虛、腎陽虛、脾虛及虛實證等少數(shù)幾個項目。目前中醫(yī)藥應(yīng)用代謝組技術(shù)研究的報道還極少,相信隨著研究的深入,代謝組技術(shù)必將廣泛地應(yīng)用于中西醫(yī)結(jié)合研究中。另外,盡管代謝組是一種高通量的研究方法,但是由于代謝組關(guān)注的是小分子的代謝物,所以如果缺乏與基因組等知識的聯(lián)系,代謝組資料是很難解釋的。將代謝組與基因組和蛋白質(zhì)組進(jìn)行結(jié)合研究也引起眾多學(xué)者的注意[50, 51],因此中西醫(yī)結(jié)合也應(yīng)積極地將代謝組與基因組和蛋白質(zhì)組進(jìn)行結(jié)合研究,即站在系統(tǒng)生物學(xué)的高度進(jìn)行研究。
【參考文獻(xiàn)】
1 Nicholson JK, Lindon JC, Holmes E. Metabonomics: understanding the metabolic responses of living systems to pathophysiological stimuli via multivariate statistical analysis of biological NMR spectroscopic data. Xenobiotica. 1999; 29(11): 11811189.
2 Lindon JC, Holmes E, Nicholson JK. So what‘s the deal with metabonomics? Anal Chem. 2003; 75(17): 384A391A.
3Nicholson JK, Wilson ID. Opinion: understanding global systems biology: metabonomics and the continuum of metabolism. Nat Rev Drug Discov. 2003; 2(8): 668676.
4 Dunn WB, Bailey NJ, Johnson HE. Measuring the metabolome: current analytical technologies. Analyst. 2005; 130(5): 606625.
5 Brindle JT, Nicholson JK, Schofield PM, et al. Application of chemometrics to 1HNMR spectroscopic data to investigate a relationship between human serum metabolic profiles and hypertension. Analyst. 2003; 128(1): 3236.
6 Lehnhardt FG, Bock C, Rohn G, et al. Metabolic differences between primary and recurrent human brain tumors: a 1HNMR spectroscopic investigation. NMR Biomed. 2005; 18(6): 371382.
7Tang H, Wang Y, Nicholson JK, et al. Use of relaxationedited onedimensional and two dimensional nuclear magnetic resonance spectroscopy to improve detection of small metabolites in blood plasma. Anal Biochem. 2004; 325(2): 260272.
8Choi YH, Kim HK, Linthorst HJ, et al. NMR metabolomics to revisit the tobacco mosaic virus infection in Nicotiana tabacum leaves. J Nat Prod. 2006; 69(5): 742748.
9 A J, Trygg J, Gullberg J, et al. Extraction and GC/MS analysis of the human blood plasma metabolome. Anal Chem. 2005; 77(24): 80868094.
10 Wilson ID, Plumb R, Granger J, et al. HPLCMSbased methods for the study of metabonomics. J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci. 2005; 817(1): 6776.
11 Yang J, Xu G, Zheng Y, et al. Diagnosis of liver cancer using HPLCbased metabonomics avoiding falsepositive result from hepatitis and hepatocirrhosis diseases. J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci. 2004; 813(12): 5965.
12 Lenz EM, Bright J, Knight R, et al. Metabonomics with 1HNMR spectroscopy and liquid chromatographymass spectrometry applied to the investigation of metabolic changes caused by gentamicininduced nephrotoxicity in the rat. Biomarkers. 2005; 10(23): 173187.
13 Sato S, Soga T, Nishioka T, et al. Simultaneous determination of the main metabolites in rice leaves using capillary electrophoresis mass spectrometry and capillary electrophoresis diode array detection. Plant J. 2004; 40(1): 151163.
14 Price KE, Vandaveer SS, Lunte CE, et al. Tissue targeted metabonomics: metabolic profiling by microdialysis sampling and microcoil NMR. J Pharm Biomed Anal. 2005; 38(5): 904909.
15 Ramadan Z, Jacobs D, Grigorov M, et al. Metabolic profiling using principal component analysis, discriminant partial least squares, and genetic algorithms. Talanta. 2006; 68(5): 16831691.
16 Coen M, O‘Sullivan M, Bubb WA, et al. Proton nuclear magnetic resonancebased metabonomics for rapid diagnosis of meningitis and ventriculitis. Clin Infect Dis. 2005; 41(11): 15821590.
17 Viant MR, Lyeth BG, Miller MG, et al. An NMR metabolomic investigation of early metabolic disturbances following traumatic brain injury in a mammalian model. NMR Biomed. 2005; 18(8): 507516.
18 Azmi J, Griffin JL, Shore RF, et al. Chemometric analysis of biofluids following toxicant induced hepatotoxicity: a metabonomic approach to distinguish the effects of 1naphthylisothiocyanate from its products. Xenobiotica. 2005; 35(8): 839852.
19 Griffin JL, Cemal CK, Pook MA. Defining a metabolic phenotype in the brain of a transgenic mouse model of spinocerebellar ataxia 3. Physiol Genomics. 2004; 16(3): 334340.
20 Gullberg J, Jonsson P, Nordstrom A, et al. Design of experiments: an efficient strategy to identify factors influencing extraction and derivatization of Arabidopsis thaliana samples in metabolomic studies with gas chromatography/mass spectrometry. Anal Biochem. 2004; 331(2): 283295.
21 Lindon JC, Holmes E, Nicholson JK. Metabonomics techniques and applications to pharmaceutical research & development. Pharm Res. 2006; 23(6): 10751088.
22 Stanley EG, Bailey NJ, Bollard ME, et al. Sexual dimorphism in urinary metabolite profiles of Han Wistar rats revealed by nuclearmagneticresonancebased metabonomics. Anal Biochem. 2005; 343(2): 195202.
23 Kochhar S, Jacobs DM, Ramadan Z, et al. Probing genderspecific metabolism differences in humans by nuclear magnetic resonancebased metabonomics. Anal Biochem. 2006; 352(2): 274281.
24 Bollard ME, Stanley EG, Lindon JC, et al. NMRbased metabonomic approaches for evaluating physiological influences on biofluid composition. NMR Biomed. 2005; 18(3): 143162.
25 Lenz EM, Bright J, Wilson ID, et al. A 1H NMR based metabonomic study of urine and plasma samples obtained from healthy human subjects. J Pharm Biomed Anal. 2003; 33(5): 11031115.
26 Lenz EM, Bright J, Wilson ID, et al. Metabonomics, dietary influences and cultural differences: a 1HNMRbased study of urine samples obtained from healthy British and Swedish subjects. J Pharm Biomed Anal. 2004; 36(4): 841849.
27 Stoyanova R, Nicholls AW, Nicholson JK, et al. Automatic alignment of individual peaks in large highresolution spectral data sets. J Magn Reson. 2004; 170(2): 329335.
28 WebbRobertson BJ, Lowry DF, Jarman KH, et al. A study of spectral integration and normalization in NMRbased metabonomic analyses. J Pharm Biomed Anal. 2005; 39(34): 830836.
29 Forshed J, Torgrip RJ, Aberg KM, et al. A comparison of methods for alignment of NMR peaks in the context of cluster analysis. J Pharm Biomed Anal. 2005; 38(5): 824832.
30 Jonsson P, Gullberg J, Nordstrom A, et al. A strategy for identifying differences in large series of metabolomic samples analyzed by GC/MS. Anal Chem. 2004; 76(6): 17381745.
31 Katajamaa M, Oresic M. Processing methods for differential analysis of LC/MS profile data. BMC Bioinformatics. 2005; 6: 179.
32 Coen M, Lenz EM, Nicholson JK, et al. An integrated metabonomic investigation of acetaminophen toxicity in the mouse using NMR spectroscopy. Chem Res Toxicol. 2003; 16(3): 295303.
33 Jansen JJ, Hoefsloot HC, Boelens HF, et al. Analysis of longitudinal metabolomics data. Bioinformatics. 2004; 20(15): 24382446.
34 Smilde AK, Jansen JJ, Hoefsloot HC, et al. ANOVAsimultaneous component analysis (ASCA): a new tool for analyzing designed metabolomics data. Bioinformatics. 2005; 21(13): 30433048.
35 Odunsi K, Wollman RM, Ambrosone CB, et al. Detection of epithelial ovarian cancer using 1HNMRbased metabonomics. Int J Cancer. 2005; 113(5): 782788.
36 Wang C, Kong H, Guan Y, et al. Plasma phospholipid metabolic profiling and biomarkers of type 2 diabetes mellitus based on highperformance liquid chromatography/electrospray mass spectrometry and multivariate statistical analysis. Anal Chem. 2005; 77(13): 41084116.
37 Bundy JG, Willey TL, Castell RS, et al. Discrimination of pathogenic clinical isolates and laboratory strains of Bacillus cereus by NMRbased metabolomic profiling. FEMS Microbiol Lett. 2005; 242(1): 127136.
38 Taylor J, King RD, Altmann T, et al. Application of metabolomics to plant genotype discrimination using statistics and machine learning. Bioinformatics. 2002; 18(Suppl 2): S241248.
39 Akira K, Imachi M, Hashimoto T. Investigations into biochemical changes of genetic hypertensive rats using 1H nuclear magnetic resonancebased metabonomics. Hypertens Res. 2005; 28(5): 425430.
40 Pears MR, Cooper JD, Mitchison HM, et al. High resolution 1HNMRbased metabolomics indicates a neurotransmitter cycling deficit in cerebral tissue from a mouse model of Batten disease. J Biol Chem. 2005; 280(52): 4250842514.
41 Ippolito JE, Xu J, Jain S, et al. An integrated functional genomics and metabolomics approach for defining poor prognosis in human neuroendocrine cancers. Proc Natl Acad Sci U S A. 2005; 102(28): 99019906.
42 Stentiford GD, Viant MR, Ward DG, et al. Liver tumors in wild flatfish: a histopathological, proteomic, and metabolomic study. OMICS. 2005; 9(3): 281299.
43 Brindle JT, Antti H, Holmes E, et al. Rapid and noninvasive diagnosis of the presence and severity of coronary heart disease using 1HNMRbased metabonomics. Nat Med. 2002; 8(12): 14391444.
44 Yang J, Xu G, Hong Q, et al. Discrimination of type 2 diabetic patients from healthy controls by using metabonomics method based on their serum fatty acid profiles. J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci. 2004; 813(12): 5358.
45 Wishart DS. Metabolomics: the principles and potential applications to transplantation. Am J Transplant. 2005; 5(12): 28142820.
46 Hewer R, Vorster J, Steffens FE, et al. Applying biofluid 1HNMRbased metabonomic techniques to distinguish between HIV1 positive/AIDS patients on antiretroviral treatment and HIV1 negative individuals. J Pharm Biomed Anal. 2006; 41(4): 14421446.
47 Kleno TG, Kiehr B, Baunsgaard D, et al. Combination of ‘omics’ data to investigate the mechanism(s) of hydrazineinduced hepatotoxicity in rats and to identify potential biomarkers. Biomarkers. 2004; 9(2): 116138.
48 Heijne WH, Lamers RJ, van Bladeren PJ, et al. Profiles of metabolites and gene expression in rats with chemically induced hepatic necrosis. Toxicol Pathol. 2005; 33(4): 425433.
49 Coen M, Ruepp SU, Lindon JC, et al. Integrated application of transcriptomics and metabonomics yields new insight into the toxicity due to paracetamol in the mouse. J Pharm Biomed Anal. 2004; 35(1): 93105.
50 Nielsen J, Oliver S. The next wave in metabolome analysis. Trends Biotechnol. 2005; 23(11): 544546.
51 Thomas CE, Ganji G. Integration of genomic and metabonomic data in systems biology—are we ‘there’ yet? Curr Opin Drug Discov Devel. 2006; 9(1): 92100.
張鈺琪 10月29日 19:00-21:00
詳情張鈺琪 9月23日 19:30-21:00
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