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    招生方案

    血液涂片的制作與染色-檢驗技士

    2014-08-21 09:15 來源:
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    血液涂片的制作與染色是臨床醫(yī)學(xué)檢驗技士考試需要了解的知識點,醫(yī)學(xué)教育|網(wǎng)搜集整理了相關(guān)內(nèi)容,希望對廣大復(fù)習(xí)備考的考生有所幫助。

    血液涂片的制作與染色:

    做好血液涂片和正確染色是血液細(xì)胞檢驗的重要步驟,涂片和染色效果的好壞直接關(guān)系著檢驗的結(jié)果,必須以認(rèn)真負(fù)責(zé)的態(tài)度注意操作過程的每一個環(huán)節(jié)。

    一.玻片的清潔

    1.一般清洗法

    (1)將玻片放入肥皂或洗衣粉水中煮沸20分鐘。

    (2)用熱水將肥皂和血膜等污物洗去,再用自來水反復(fù)沖洗,最后再用蒸餾水沖洗3~5次。必要時再置95%乙醇中浸泡1小時,然后擦干或烘干備用。新玻片常有游離堿質(zhì),因此應(yīng)用清潔液或10%鹽酸浸泡24小時,然后分別用自來水及蒸餾水徹底洗滌。

    2.油污載片清洗法

    (1)清洗液

    甲液:10g/L的過錳酸鉀水溶液,乙液:25g/L的草酸水溶液。

    (2)清洗方法:將用過的玻片投入甲液數(shù)小時,取出后再投入乙液數(shù)小時,然后用自來水和蒸餾水沖洗干凈后再置95%乙醇中,以毛巾擦干凈即成。久用后甲液可出現(xiàn)泥沙樣沉淀,乙液有乳白色沉淀,可用棉花濾去再用,如乙液褪色應(yīng)重新配置。

    二.血涂片制作

    取末梢血1滴,置載玻片一端,取另一邊緣光滑的推片,放在血滴前面慢慢后移,接觸血滴后稍停。血液即沿推片散開,將推片與載片保持30~45°角,向前平穩(wěn)均勻推動推片,載片上便留下一層薄血膜。血涂片制成后,立即在空氣中揮動,使其迅速干燥,以免血細(xì)胞變形。血膜干燥后,用鉛筆在血膜的一側(cè)寫上病人姓名或編號。

    一張良好的血片,厚薄要適宜,頭體尾要明顯,細(xì)胞分布要均勻,膜的邊緣要整齊,并留有一定的空隙。

    涂片時,血滴愈大,角度愈大,推片速度愈快則血膜愈厚,反之血膜愈薄。太薄的血膜片50%的白細(xì)胞集中于邊緣或尾部,不利于白細(xì)胞分類。如果血膜分布不勻,主要是推片不整齊,用力不均勻,載片不清潔所致。

    三.染色

    1.瑞氏染色法(Wrightstaining)

    本法的特點是將固定和染色合并在一起進行,手續(xù)簡便,染色時間短,對白細(xì)胞中的特異性顆粒著色較好,但對核的著色較差。

    (1)原理:瑞氏染粉是由伊紅和美藍(lán)混合后組成的一種中性鹽染料。伊紅是一種酸性染料,為伊紅鈉鹽,其有色部分為陰離子;美藍(lán)是一種堿性染料,為氯化美藍(lán),有色基團為陽離子。如以M+代表美藍(lán),以E-代表伊紅,其反應(yīng)式為:

    M+Cl-+Na+E→ME↓+NaCl

    美藍(lán);伊紅;伊紅化美藍(lán)(瑞士染料)

    將適量的ME溶解在甲醇中,即成為瑞氏染液。甲醇的作用可使ME溶解,解離為M+和E-,這兩種有色離子可以選擇性地吸附血細(xì)胞內(nèi)的不同成分而著色。甲醇的另一個作用是有很強的脫水作用,可將細(xì)胞固定為一定形態(tài),當(dāng)細(xì)胞發(fā)生凝固時,蛋白質(zhì)被沉淀為顆粒狀或者網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),增加細(xì)胞結(jié)構(gòu)的表面積,提高對染料的吸附作用,增強染色效果。

    細(xì)胞的著色過程是染料透入被染物并存留其內(nèi)部的一種過程,此過程既有物理吸附作用,又有化學(xué)親和作用。各種細(xì)胞及細(xì)胞的各種成分由于其化學(xué)性質(zhì)不同,對各種染料的親和力也不一樣,因此,在血片上可以見到不同的著色。細(xì)胞中堿性物質(zhì)與酸性染料伊紅結(jié)合染成紅色,因此該物質(zhì)又稱為嗜酸性物質(zhì)。如,紅細(xì)胞中的血紅蛋白,嗜酸性粒細(xì)胞胞漿中的顆粒為堿性物質(zhì),這些物質(zhì)可與伊紅結(jié)合染成紅色。細(xì)胞中的酸性物質(zhì)可與染液中的堿性染料美藍(lán)結(jié)合染成藍(lán)色,該物質(zhì)又稱嗜堿性物質(zhì),如:嗜堿性粒細(xì)胞中的顆粒為酸性物質(zhì)可與堿性染料美藍(lán)結(jié)合染成藍(lán)色。細(xì)胞核主要由脫氧核糖核酸和強堿性的組蛋白、精蛋白等形式的核蛋白所組成,這種強堿性的物質(zhì)與瑞氏染液中的酸性染料伊紅結(jié)合成紅色,但因為核蛋白中還有少量的弱酸性物質(zhì),它們又與染料中的堿性染料美藍(lán)作用染成藍(lán)色。但因含量太少,藍(lán)色反應(yīng)極弱,故核染色呈現(xiàn)紫紅色。幼稚紅細(xì)胞的胞漿和細(xì)胞核的核仁中含有酸性物質(zhì),它們與染液中的堿性染料美藍(lán)有親和力,故染成藍(lán)色。當(dāng)細(xì)胞含酸、堿性物質(zhì)各半時,它們既與酸性染料作用,又與堿性染料作用,染成紅藍(lán)色或灰紅色,即所謂多嗜性。當(dāng)胞漿中的酸性物質(zhì)消失時,只與染液中的伊紅起作用,則染成紅色,即所謂正色性。

    (2)試劑

    ①瑞氏染液

    瑞氏染料(粉)1.0g

    純甲醇(AR級以上)600.0ml

    將全部染料放入乳缽內(nèi),先加少量甲醇慢慢地研磨(至少半小時),以使染料充分溶解,再加一些甲醇混勻,然后將溶解的部分倒人潔凈的棕色瓶內(nèi),乳缽內(nèi)剩余的未溶解的染料,再加入少許甲醇細(xì)研,如此多次研磨,直至染料全部溶解,甲醇用完為止。密閉保存。

    ②磷酸鹽緩沖液(pH6.4~6.8)

    磷酸二氫鉀(KH2PO4)0.3g

    磷酸氫二鈉(Na2HPO4)0.2g

    蒸餾水加至1000.0ml

    配好后用磷酸鹽溶液校正pH,如無緩沖液可用新鮮蒸餾水代替。

    (3)操作

    ①用蠟筆在血膜兩頭劃線,以防染液溢出,然后將血膜平放在染色架上。

    ②用瑞氏染液3~5滴覆蓋整個血膜,固定細(xì)胞0.5~1分鐘。

    ③滴加等量或稍多的緩沖液,用吸球?qū)⑵渑c染液吹勻,或者搖動玻片染色5~10分鐘。

    ④慢慢搖動玻片,然后用流動水從玻片的一側(cè)沖去染液,待血片自然干燥后(或用濾紙吸干),即可鏡檢。

    2.姬姆薩染色法(Giemsastaining)

    (1)原理姬姆薩染料由天青、伊紅組成,其染色原理與瑞氏染色法基本相同,但姬姆薩染色

    法對細(xì)胞核著色較好,結(jié)構(gòu)顯示更清晰,而對胞漿和中性顆粒則染色較差。

    (2)試劑

    姬姆薩(Giemsa)染料1.0g甘油66.0ml甲醇66.0ml

    將1.0g姬姆薩染料粉末全部倒入盛有66.0ml甘油的圓錐燒瓶內(nèi),在56℃的水浴鍋上加熱90~120分鐘,使染料與甘油充分混勻溶解,然后加入60℃預(yù)熱的甲醇,充分搖勻后置棕色瓶中,于室溫下7天,過濾后才能使用。此種染液放置時間愈久,細(xì)胞著色越佳。

    (3)操作

    ①。將干燥血片用甲醇固定3~5分鐘。

    ②。將固定的血片置于被pH6.4~6.8磷酸鹽緩沖液(同瑞氏染色)稀釋10~20倍的姬姆薩染液中,浸染10~30分鐘(標(biāo)本較少可用滴染法)。

    ③。取出用水沖洗,待干后鏡檢。

    3.瑞氏姬姆薩混合一次染色法

    I液:取瑞氏染粉1g、姬姆薩染粉0.3g,置潔凈研缽中,加少量甲醇(分析純)研磨片刻,吸出上層染液。再加少量甲醇,繼續(xù)研磨,再吸出上液。如此連續(xù)幾次,共用甲醇500ml,收集于棕色瓶中,每天早、晚各振搖3分鐘,共5天,以后存放1周即能使用。

    Ⅱ液:pH6.4~6.8磷酸鹽緩沖液

    磷酸二氫鉀(無水)6.64g磷酸氫二鉀(無水)2.56g加少量蒸餾水溶解,用磷酸鹽調(diào)整pH,加水至1000ml.

    操作平置玻片于染色架上,滴加染液3~5滴,使其迅速蓋滿血膜,約1分鐘后,滴加緩沖液5~10滴,輕輕搖動玻片或?qū)?zhǔn)血片吹氣,與染液充分混合,5~10分鐘后用水沖去染液,待干醫(yī)`學(xué)教育網(wǎng)搜集整理。

    四.血涂片的質(zhì)量控制

    1.血膜片的質(zhì)量要求是厚薄均勻適度,低倍鏡下觀察全片,細(xì)胞不重疊,頭尾及兩側(cè)有一定的空隙,血膜頭部有明確的病人標(biāo)志。

    2.些體積較大的特殊細(xì)胞常在血膜的尾部出現(xiàn),因此蠟筆劃線時應(yīng)注意保存血膜尾部細(xì)胞,血膜必須充分干燥,否則在染色過程中容易脫落。

    3.配制染料須用優(yōu)質(zhì)甲醇,稀釋染液用緩沖液,因為緩沖液的pH對細(xì)胞染色的影響很重要。在偏酸性環(huán)境中正電荷增多,在偏堿性環(huán)境中負(fù)電荷增多,又因為細(xì)胞著色對氫離子濃度十分敏感。如果染色偏堿,原是紫紅色的中性顆粒則染成深藍(lán)色,造成識別困難。沖洗須用中性水,雖亦可用自來水(但不能保持穩(wěn)定)。

    4.對所用染液應(yīng)進行預(yù)染試驗,新配制的染液放置一段時間后其中的美藍(lán)逐漸氧化成天青B,天青B對細(xì)胞核的著色效果比美藍(lán)好,因此,瑞氏染液放置時間越長染色效果越好,臨床上稱之為成熟。判斷染液成熟程度的簡易方法是用正常優(yōu)質(zhì)血片做預(yù)染試驗,先用低倍鏡觀察載有染液的血片,認(rèn)為著色滿意后,再按照染色后沖洗順序最后用油鏡鏡檢,這樣不僅可了解染液的成熟程度,而且還可以選擇合適的染色時間,供臨床標(biāo)本染色時參考。

    5.染液與緩沖液的比例要適當(dāng),以1∶27為宜。一般說來緩沖液稀釋度愈大,染色時間愈長,細(xì)胞著色愈勻稱、鮮艷。緩沖液和染液量要充足,否則染液很快蒸發(fā),染料沉淀于細(xì)胞上,使細(xì)胞深染而無法檢查。細(xì)胞較多較厚的涂片(如紅細(xì)胞增多癥)染液應(yīng)多些。細(xì)胞較少的涂片染液應(yīng)少些。

    6.染色時間與染液濃度、室溫高低、細(xì)胞多少有關(guān),染液愈淡,室溫越低,細(xì)胞愈多,所需時間越長,應(yīng)適當(dāng)增加染液濃度,因此必須根據(jù)情況靈活掌握。

    7.染色良好的血膜片,外觀呈淺紅色,紅細(xì)胞呈粉紅色,白細(xì)胞核呈暗紫紅色,染色質(zhì)結(jié)構(gòu)能辨,粒細(xì)胞的顆粒呈固有種異顏色。

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