免疫組織的標本是如何處理的呢？快來跟著小編了解一下吧！

（一）標本的主要來源

1.活體組織：應取材于病變組織及病變與正常組織交界處，大小適中。減少對組織標本的損傷與擠壓。

2.體液、穿刺液：可直接涂片或經(jīng)離心后取沉淀物涂片。

3.培養(yǎng)細胞：懸浮培養(yǎng)的細胞經(jīng)離心沉淀后做細胞涂片，蓋玻片上的單層培養(yǎng)細胞直接固定。

（二）標本的固定與保存

1.標本固定的目的：使細胞內(nèi)蛋白質(zhì)凝固，細胞內(nèi)分解酶反應終止，以防止細胞自溶，保持細胞形態(tài)和結(jié)構(gòu)；保存組織細胞抗原性；防止標本脫落；除去妨礙抗體結(jié)合的類脂，便于保存；抑制組織中細菌的繁殖，防止組織腐敗和在后續(xù)組織制備中的細胞結(jié)構(gòu)和成分的改變。標本的固定應以不損傷細胞形態(tài)，不干擾固定后抗原的識別和結(jié)合為原則。

2.固定劑的選擇：蛋白質(zhì)類抗原，可用乙醇或甲醇固定；微生物抗原可用丙酮或三氯化碳固定；如需除去病毒的蛋白質(zhì)外殼，可使用胰蛋白酶；多糖類抗原用10%福爾馬林固定或以微火加熱固定；如有黏液物質(zhì)存在，應用透明質(zhì)酸酶等處理除去；類脂質(zhì)豐富的組織進行蛋白、多糖抗原檢測時，需用有機溶劑（乙醚、丙酮等）處理除去類脂。組織標本常規(guī)固定液為中性緩沖甲醛。

3.制片方法的評價：冷凍和石蠟切片是免疫組化最常用的制片方法。首選冷凍切片。其操作簡便，可避免石蠟切片因固定（甲醛）、脫水、浸蠟等對抗原所造成的損失，適用于不穩(wěn)定的抗原。石蠟切片是研究形態(tài)學的主要制片方法，它不但是觀察組織細胞結(jié)構(gòu)的理想方法，而且可用在陳舊石蠟包埋材料免疫組化的回顧性研究。切片薄而有連續(xù)性，可長期保存。但對抗原的保存不如冷凍切片。

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